Funciones fisiológicas del níquel

Funciones fisiológicas del níquel en la caña de azúcar

Octubre 20, 2023
5mins
Maria Lanza
Brazil

El níquel (Ni) es el elemento más nuevo en la clasificación de la esencialidad, y sus funciones están directamente relacionadas con el metabolismo del nitrógeno (N), porque es un constituyente de la enzima ureasa, responsable de transformar la urea en amoníaco (NH3) Dixon et al. (1975).

La Figura 1 demuestra que la enzima ureasa tiene dos átomos de Ni en uno de sus centros estructurales, que son esenciales para que la enzima funcione en el metabolismo de N.

 

Dinámica de absorción de Ni: El Ni se absorbe en forma divalente (Ni2+) mediante difusión pasiva o transporte activo. Aproximadamente el 50% del Ni absorbido se retiene en las raíces, el 80% en el cilindro vascular y menos del 20% en la corteza. Esta distribución sugiere que el Ni es un elemento de alta movilidad en el xilema y el floema (Harasim & Filipek 2015).

Dinámica de transporte de Ni: El transporte del Ni desde las raíces hasta la germinación está regulado por complejos metal-ligantes, como la nicotianamina (NA), la histidina (His) y los ácidos orgánicos (ácido cítrico y ácido málico). El pH influye en las formas de Ni en los exudados de xilema, con citrato a pH 5,0 e histidina a pH 6,5.(Rodríguez-Jiménez et al. 2016).

Síntomas de deficiencia de Ni: La deficiencia de Ni reduce la actividad de la ureasa, causando acumulación de urea y necrosis en las puntas de las hojas más viejas (Ali et al. 2009). La acumulación de urea dentro de la célula a una alta concentración deteriora los compuestos intermedios del ciclo de la ornitina (Gerendás y Sattelmacher 1997).

Funciones principales del Ni: La aplicación de Ni contribuye a numerosos procesos fisiológicos en el metabolismo de las plantas, que resultan en un aumento de la productividad a través de las funciones principales:

1.Activador de la ureasa: El Ni es un constituyente de la enzima ureasa, que cataliza la hidrólisis de la urea en amoníaco (NH3+) y dióxido de carbono (CO2) en el tejido celular vegetal, siendo responsable por la disponibilidad de aminoácidos y la biosíntesis de proteínas (Souza et al. 2020).

2.Atenuador de estrés: El Ni+2 también es un cofactor de las enzimas catalasa (CAT) y superóxido dismutasa (SOD), que pertenecen al metabolismo antioxidante de las plantas y pueden influir directamente en el aparato fotosintético de la planta (Scalabrin et al. 2016).

3.Regulador hormonal: La aplicación de Ni reduce la síntesis de etileno a través de Ni+2 y la ACC oxidasa se inactiva por sustitución de Fe2+ (Zheng et al. 2006).

Estudios recientes han demostrado que la aplicación de Ni en la caña de azúcar aumenta la eficiencia del metabolismo del N, la capacidad antioxidante enzimática y no enzimática y la productividad de los cultivares de la caña de azúcar, promoviendo la tolerancia de los cultivos al estrés abiótico y dando como resultado ganancias en la productividad (Rampazzo et al., 2022).

Las dosis de Ni dieron como resultado un aumento de la masa seca de la raíz, la masa seca de la hoja, el número de macollos, la altura de la planta, la masa seca del tallo y la productividad. La productividad de la caña de azúcar mostró una correlación positiva con la actividad de la nitrato reductasa y los pigmentos fotosintéticos (Figura 2).

Por lo tanto, el aumento de la biosíntesis de aminoácidos causado por el Ni fue importante para aumentar el peso seco de la parte aérea de la caña de azúcar, destacando la capacidad del Ni para aumentar la productividad de los cultivos.

 

 

Referencias:

Barcelos et al. (2018). Plant Pathology, 67(7), 1502-1513.

Souza et al. (2020). Acta physiologiae plantarum, 42, 1-11.

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Gerendás et al. (1997). Plant and Soil, 190, 153-162.

Harasim, P., & Filipek, T. (2015. Journal of Elementology, 20(2).

Lebrette et al. (2014). Structure, 22(10), 1421-1432. doi: 10.1016/j.str.2014.07.012

Rampazzo et al. (2022). Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 1-11.

Rodríguez-Jiménez et al. (2016). Revista Chapingo. Serie horticultura, 22(2), 69-82.

Scalabrin et al. (2016). Plant Physiology and Biochemistry, 103, 53-60.

Zheng et al. (2006). Postharvest biology and technology, 42(1), 98-103.

 

Referencias:

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2.Barcelos, J. P. Q., Reis, H. P. G., Godoy, C. V., Gratão, P. L., Furlani Junior, E., Putti, F. F., … & Reis, A. R. (2018). Impact of foliar nickel application on urease activity, antioxidant metabolism and control of powdery mildew (Microsphaera diffusa) in soybean plants. Plant Pathology67(7), 1502-1513.

3.Dixon, N. E., Gazzola, C., Watters, J. J., Blakeley, R. L., & Zerner, B. (1975). Inhibition of jack bean urease (EC 3.5. 1.5) by acetohydroxamic acid and by phosphoramidate. Equivalent weight for urease. Journal of the American Chemical Society97(14), 4130-4131.

4.Lebrette, H., Brochier-Armanet, C., Zambelli, B., Reuse, H., Borezïe-Durant, E., Ciurli, S., & Cavazza, C. (2014). Promiscuous nickel import in human pathogens: structure, thermodynamics, and evolution of extracytoplasmic nickel-binding proteins. Structure, 22(10), 1421-1432. doi: 10.1016/j.str.2014.07.012

5.Harasim, P., & Filipek, T. (2015). Nickel in the environment. Journal of Elementology20(2).

6.Rodríguez-Jiménez, T. D. J., Ojeda-Barrios, D. L., Blanco-Macías, F., Valdez-Cepeda, R. D., & Parra-Quezada, R. (2016). Urease and nickel in plant physiology. Revista Chapingo. Serie horticultura22(2), 69-82.

7.Gerendás, J., & Sattelmacher, B. (1997). Significance of Ni supply for growth, urease activity and the concentrations of urea, amino acids and mineral nutrients of urea-grown plants. Plant and Soil190, 153-162.

8.Scalabrin, E., Radaelli, M., & Capodaglio, G. (2016). Simultaneous determination of shikimic acid, salicylic acid and jasmonic acid in wild and transgenic Nicotiana langsdorffii plants exposed to abiotic stresses. Plant Physiology and Biochemistry103, 53-60.

9.de Souza, S. C. R., Sodek, L., Polacco, J. C., & Mazzafera, P. (2020). Urease deficiency alters nitrogen metabolism and gene expression in urease-null soybean without affecting growth or productivity under nitrate supply. Acta physiologiae plantarum42, 1-11.

10.Zheng, Q. L., Nakatsuka, A., Matsumoto, T., & Itamura, H. (2006). Pre-harvest nickel application to the calyx of ‘Saijo’persimmon fruit prolongs postharvest shelf-life. Postharvest biology and technology42(1), 98-103.

11.Rampazzo, M. V., Cunha, M. L. O., de Oliveira, L. C. A., Silva, V. M., Lanza, M. G. D. B., de Melo, A. A. R., & dos Reis, A. R. (2022). Physiological Roles of Nickel on Antioxidant and Nitrogen Metabolism Increasing the Yield of Sugarcane Plants. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 1-11.