Papéis Fisiológicos do Níquel

Papéis Fisiológicos do Níquel em Cana-de-Açúcar

October 20, 2023
5mins
Maria Lanza
Brazil

O níquel (Ni) é o elemento mais novo na classificação de essencialidade, e suas funções estão diretamente relacionadas com o metabolismo do nitrogênio (N), pois é um constituinte da enzima urease, responsável por transformar a ureia em amônia (NH3) Dixon et al. (1975).

A figura 1 demonstra que a enzima urease possui dois átomos de Ni em um de seus centros estruturais, que são essenciais para tornar a enzima funcional no metabolismo do N.

 

Dinâmica de absorção de Ni: O Ni é absorvido na forma divalente (Ni2+) via difusão passiva ou transporte ativo. Aproximadamente 50% do Ni absorvido é retido nas raízes, sendo 80% no cilindro vascular e menos de 20% no córtex. Essa distribuição sugere que o Ni é um elemento de alta mobilidade no xilema e floema (Harasim & Filipek 2015).

Dinâmica de transporte Ni:. O transporte do Ni das raízes para a parte aérea é regulado por complexos metal-ligante, como a nicotianamina (NA), histidina (His) e ácidos orgânicos (ácido cítrico e ácido málico). O pH influencia as formas de Ni nos exsudatos do xilema, com citrato em pH 5,0 e histidina em pH 6,5.(Rodríguez-Jiménez et al. 2016).

Sintomas de Deficiência de Ni: A deficiência de Ni reduz a atividade da urease, causando acúmulo de ureia e necrose nas pontas das folhas mais velhas (Ali et al. 2009 ). O acúmulo de ureia dentro da célula em alta concentração prejudicando os compostos intermediários do ciclo da ornitina (Gerendás e Sattelmacher 1997 ).

Principais Funções do Ni: A aplicação de Ni contribui para inúmeros processos fisiológicos no metabolismo vegetal, que resultam em aumento de produtividade por meio das principais funções:

1.Ativador da Urease: O Ni é constituinte da enzima urease, que catalisa a hidrólise da uréia em amônia (NH3+) e dióxido de carbono (CO2) no tecido celular vegetal, sendo responsável pela disponibilidade de aminoácidos e biossíntese de proteínas (Souza et al. 2020 ).

2.Atenuador de estresse: O Ni+2 também é um cofator das enzimas Catalase (CAT) e Superóxido Dismutase (SOD), que pertencem ao metabolismo antioxidante das plantas, e pode influenciar diretamente no aparato fotossintético vegetal (Scalabrin et al. 2016).

3.Regulador hormonal: A aplicação de Ni reduz a síntese de etileno por meio do Ni+2 a ACC oxidase é inativada pela substituição do Fe2+ (Zheng et al. 2006).

Estudos recentes mostraram que a aplicação de Ni em cana-de-açúcar aumenta a eficiência do metabolismo do N, a capacidade antioxidante enzimática e não enzimática e a produtividade de cultivares de cana-de-açucar, promovendo a tolerância da cultura ao estresse abiótico, e resultando em ganhos em produtividade (Rampazzo et al., 2022).

A doses de Ni resultaram em aumento massa seca da raiz, massa seca da folha, número de perfilhos, altura da planta, massa seca do colmo e produtividade. A produtividade da cana-de-açúcar apresentou correlação positiva com a atividade da redutase do nitrato, e pigmentos fotossintéticos (Figura 2).

Desta forma, o aumento da biossíntese de aminoácidos causado pelo Ni foi importante para aumentar o peso seco da parte aérea da cana-de-açúcar, destacando a capacidade do Ni em aumentar a produtividade das culturas.

 

 

Referencias:

Barcelos et al. (2018). Plant Pathology, 67(7), 1502-1513.

Souza et al. (2020). Acta physiologiae plantarum, 42, 1-11.

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Gerendás et al. (1997). Plant and Soil, 190, 153-162.

Harasim, P., & Filipek, T. (2015. Journal of Elementology, 20(2).

Lebrette et al. (2014). Structure, 22(10), 1421-1432. doi: 10.1016/j.str.2014.07.012

Rampazzo et al. (2022). Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 1-11.

Rodríguez-Jiménez et al. (2016). Revista Chapingo. Serie horticultura, 22(2), 69-82.

Scalabrin et al. (2016). Plant Physiology and Biochemistry, 103, 53-60.

Zheng et al. (2006). Postharvest biology and technology, 42(1), 98-103.

 

Referencias:

1.Zheng, Q. L., Nakatsuka, A., Matsumoto, T., & Itamura, H. (2006). Pre-harvest nickel application to the calyx of ‘Saijo’persimmon fruit prolongs postharvest shelf-life. Postharvest biology and technology42(1), 98-103.

2.Barcelos, J. P. Q., Reis, H. P. G., Godoy, C. V., Gratão, P. L., Furlani Junior, E., Putti, F. F., … & Reis, A. R. (2018). Impact of foliar nickel application on urease activity, antioxidant metabolism and control of powdery mildew (Microsphaera diffusa) in soybean plants. Plant Pathology67(7), 1502-1513.

3.Dixon, N. E., Gazzola, C., Watters, J. J., Blakeley, R. L., & Zerner, B. (1975). Inhibition of jack bean urease (EC 3.5. 1.5) by acetohydroxamic acid and by phosphoramidate. Equivalent weight for urease. Journal of the American Chemical Society97(14), 4130-4131.

4.Lebrette, H., Brochier-Armanet, C., Zambelli, B., Reuse, H., Borezïe-Durant, E., Ciurli, S., & Cavazza, C. (2014). Promiscuous nickel import in human pathogens: structure, thermodynamics, and evolution of extracytoplasmic nickel-binding proteins. Structure, 22(10), 1421-1432. doi: 10.1016/j.str.2014.07.012

5.Harasim, P., & Filipek, T. (2015). Nickel in the environment. Journal of Elementology20(2).

6.Rodríguez-Jiménez, T. D. J., Ojeda-Barrios, D. L., Blanco-Macías, F., Valdez-Cepeda, R. D., & Parra-Quezada, R. (2016). Urease and nickel in plant physiology. Revista Chapingo. Serie horticultura22(2), 69-82.

7.Gerendás, J., & Sattelmacher, B. (1997). Significance of Ni supply for growth, urease activity and the concentrations of urea, amino acids and mineral nutrients of urea-grown plants. Plant and Soil190, 153-162.

8.Scalabrin, E., Radaelli, M., & Capodaglio, G. (2016). Simultaneous determination of shikimic acid, salicylic acid and jasmonic acid in wild and transgenic Nicotiana langsdorffii plants exposed to abiotic stresses. Plant Physiology and Biochemistry103, 53-60.

9.de Souza, S. C. R., Sodek, L., Polacco, J. C., & Mazzafera, P. (2020). Urease deficiency alters nitrogen metabolism and gene expression in urease-null soybean without affecting growth or productivity under nitrate supply. Acta physiologiae plantarum42, 1-11.

10.Zheng, Q. L., Nakatsuka, A., Matsumoto, T., & Itamura, H. (2006). Pre-harvest nickel application to the calyx of ‘Saijo’persimmon fruit prolongs postharvest shelf-life. Postharvest biology and technology42(1), 98-103.

11.Rampazzo, M. V., Cunha, M. L. O., de Oliveira, L. C. A., Silva, V. M., Lanza, M. G. D. B., de Melo, A. A. R., & dos Reis, A. R. (2022). Physiological Roles of Nickel on Antioxidant and Nitrogen Metabolism Increasing the Yield of Sugarcane Plants. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 1-11.